U14细胞（U14血清、U14培养基）

更新时间：2018-05-07

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细胞培养传代操作：【严格遵照无菌操作】

1、吸出原瓶中的培养基，PBS缓冲液润洗细胞两次，加胰酶（2-3ml0.25%）进行消化；

注意：胰酶消化时把握时间，通常控制在1-2min；

2、镜下观察消化情况，在细胞边缘缩小，贴壁松动时去掉胰酶，加4-6ml*培养基，轻轻吹打细胞层，尽量把细胞层吹落、吹散；

3、取部分细胞悬液转移到新的培养皿、瓶中，添加适当的*培养基，把细胞悬液打匀，于培养箱中培养；

U14细胞（U14血清、U14培养基） 部分细胞培养信息：（更多、更全的细胞信息请资料细胞库管理员）

BJ细胞信息：贴壁细胞培养基： 90% DMEM高糖血清： 10% 胎牛血清

BNL CL.2细胞信息：贴壁细胞培养基： 90% 高糖DMEM 血清： 10% 胎牛血清

BRL细胞信息：贴壁细胞培养基： 90% DMEM高糖血清： 10% 胎牛血清

BS-C-1细胞信息：贴壁细胞培养基： 90% EMEM 血清： 10% 胎牛血清

BSMSCs细胞信息：贴壁细胞培养基： 90% DMEM高糖血清： 10% 胎牛血清

BT-474细胞信息：贴壁细胞培养基： 90% RPMI-1640 血清： 10% 胎牛血清

BV2细胞信息：半悬浮半贴壁培养基： 90% DMEM高糖血清： 10% 胎牛血清

BxPC-3细胞信息：贴壁细胞培养基： 90% RPMI-1640 血清： 10% 胎牛血清

细胞因子与神经干细胞的增殖、分化密切相关

不同的细胞因子在神经干细胞的诱导分化中起重要作用 ,但尚没有一种细胞因子能在体外将神经干细胞全部诱导分化为所需的功能神经细胞 ,参与神经干细胞诱导分化的细胞因子有白细胞介素类 ,如IL-1、IL-7、IL-9及IL-1 1等。

神经营养因子对神经干细胞分化到终末细胞的整个过程均有影响 ,如果将培养的神经干细胞置于脑源性神经营养因子作用下 ,大量的神经干细胞可以表现出分化神经元的特性。

RTE细胞气管上皮细胞种属：大鼠

RYTF细胞成纤维细胞种属:兔

生长因子类 ,如上皮生长因子、神经生长因子及碱性成纤维细胞生长因子等也影响神经干细胞的分化。神经干细胞对不同种类、不同浓度的因子 ,以及多种因子联合应用作用各不相同 ,在神经干细胞发育分化的不同阶段 ,相同因子的作用也不同。

如在表皮生长因子及碱性成纤维细胞生长因子存在的条件下 ,胚胎神经干细胞主要向神经元、星形胶质细胞和少突胶质细胞分化 ,而出生后及成年的脑神经干细胞 ,则无论是否有上皮生长因子及碱性成纤维细胞生长因子 ,都主要分化为星形胶质细胞。

这些研究提示 ,上皮生长因子及碱性成纤维细胞生长因子对神经干细胞向功能细胞的诱导分化是复杂的。

RTE细胞气管上皮细胞种属：大鼠

RYTF细胞成纤维细胞种属:兔

信号转导在神经干细胞分化中十分重要。作为一种信号传导途径 ,Notch信号传导系统尚未*阐明。

目前认为Notch受体是一种整合型膜蛋白 ,是一个保守的细胞表面受体 ,它通过与周围配体接触而被激活 ,其信号传导途径开始于Notch受体与配体结合后其胞浆区从细胞膜上脱落 ,并向细胞核转移 ,将信号传递给下游信号分子。

该途径的信号传递主要是通过蛋白质相互作用 ,引起转录调节因子的改变或将转录调节因子结合到靶基因上 ,实现对特定基因转录的调控。

293ET细胞胚肾细胞种属：人

293KB细胞胚肾细胞种属：人

当激活Notch途径时 ,干细胞进行增殖 ,当抑制Notch活性时 ,干细胞进入分化程序。这些研究结果表明找到调节Notch信号途径的方式 ,就可能通过改变Notch信号来调控神经干细胞向神经功能细胞分化的过程和比例。此外 ,Janus激酶信号转导递质与转录激活剂 (JAK-STAT)信号传导系统也参与干细胞的调控。

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