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HIF细胞传代培养(人肠道成纤维细胞)
点击次数:477 更新时间:2023-12-07

细胞:HIF细胞

中文名称:人肠道成纤维细胞

生长特性:贴壁

培养基:DMEM-H培养基  血清:10%FBS(GIBCO胎牛血清) 

冻存条件:50%基础培养基、40% FBS、10% DMSO

(网络信息主针对网络推广作用,仅供参考,细胞培养请咨询细胞库管理员,以细胞库管理员提供给您的信息为准,操作前,如果有不明白之处,先咨询细胞库管理员,避免不必要的损失;) 

细胞传代

1):细胞密度约80%时,吸出原培养瓶中的培养基,PBS缓冲液润洗细胞两次,加2~3 ml 0.25% yi酶进行消化细胞(注意根据实际情况,把握消化时间)。

2):镜下观察消化情况,在细胞边缘缩小,贴壁松动时(可用吸管吸起些许yi酶轻轻吹打细胞层某处,即可肉眼可见细胞层脱落,或吹打后镜下观察吹打处,即消化完成,否则继续消化)直接吸掉yi酶,加3~4ml 培养基,轻轻吹打细胞层,把细胞层吹落,吹散。

3):取部分细胞悬液转移到新的培养皿中,添加适当的培养基,把细胞悬液打匀,于培养箱中培养。

4):注意培养基PH值变化情况,定期换液(每周2-3次),待细胞密度达到80%以后重复1项操作或者冻存。


AIV-H5核酸扩增检测 PCR扩增:

取出AIV-H5-PCR MIX、Taq酶系,逆转录酶系室温融化并振荡混匀后,10,000rpm离心10s。

设所需要的PCR反应管管数为N(N=样本数+1管阴性对照+1管阳性对照),每个测试反应体系配制如下表:

AIV-H5-PCR MIX 用量 20μl

逆转录酶系  用量1μl

Taq酶系     用量1μl

计算好各试剂的使用量,加入一适当体积洁净离心管中,充分混匀,10,000rpm离心10s,向设定的N个PCR反应管中分别加入22μl,向每管中加入处理后样品(所获得的RNA样品,加样前请13,000瞬时离心10s)或AIV-H5阳性质控品和阳性质控品和阴性质控品3μl,10,000rpm瞬时离心30秒。

将各反应管放入定量PCR仪器的反应槽内,按对应顺序设置阴性质控品,阳性质控品以及未知标本,并设置反应体积(30μl)样品名称、标记荧光基团种类(报告基团为FAM,淬灭基团TAMRA)和循环条件:

ABI PRISM 7700,ABI PRISM5700,ABI GeneAmp 7000 (需要剪掉反应盖),ABI PRISM7300/7500(使用8联管),MJ Opticon(使用8联管)等使用薄壁管的仪器;

循环条件: 50℃→20分钟逆转录,后95℃→2分钟变性,后95℃ 10秒→55℃ 45秒→72℃ 45秒,5个循环预扩增;最后95℃ 10秒→55℃ 45秒40个循环扩增(收集荧光)。

LightCycler等使用毛细管的仪器:循环条件:50℃→20分钟逆转录,后95℃→2分钟变性,后95℃ 5秒→55℃ 45秒→72℃ 45秒,5个循环预扩增;最后95℃ 5秒→58℃ 45秒40个循环扩增(收集荧光)。

3. 结果分析判定:

反应结束后,使用手动调整阈值使阴性质控品Ct 值在40以上,Ct 值小于38个循环的为阳性;Ct 值在38-40个循环之间,为灰区,需要进行重复试验。重复试验之后,如果Ct 值仍然在38-40个循环之间,判断为阳性,没有荧光值增长为阴性。


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